2-8℃

白血病抑制因子(LIF)是一种白细胞介素6类细胞因子，通过抑制分化影响细胞生长。当LIF水平下降时，细胞会进行分化。LIF与特定的LIF受体（LIFR-α）结合，后者与该受体家族所有成员共有的特定亚基--GP130信号转导亚基形成一个异质体。这导致了JAK/STAT（Janus激酶/信号转导者和转录激活者）和MAPK（有丝分裂原激活蛋白激酶）级联的激活。LIF通常在发育中的胚胎滋养层表达，其受体LIFR在整个内细胞群中表达。由于胚胎干细胞来自囊胚阶段的内细胞团，将它们从内细胞团中移除，也就消除了其LIF的

本试剂盒采用双抗体夹心法ELISA技术:将捕获抗体包被于酶标板上，捕获样品及标准品中的待测物LIF，清洗后，再加入生物素标记的检测抗体进行孵育后清洗，形成“捕获抗体-抗原-检测抗体”免疫复合物，随后加入链霉亲和素偶联的辣根过氧化物酶进行孵育，待孵育结束后清洗，接着加入TMB显色后，若样本中有待测物则显蓝色，加入终止液停止反应。检测过程中游离的成分均被洗去，用酶标仪在450 nm处测OD值，颜色的深浅和样品中的待测物的含量呈正比，通过绘制标准曲线计算出样本中LIF的浓度。

所有标准品、样品建议复孔检测 1.酶标板准备：确定试验所需要的孔数，取下未使用的酶标条放回装有干燥剂的铝箔袋。 2.样本孵育：每孔分别加入100μL不同浓度的标准品以及预处理过的待测样品（建议样本用通用稀释液最少稀释1倍上样，目的是减少基质效应），盖上封板胶纸，37℃避光反应1 h。孵育结束后，每孔加入300μL 1×洗涤缓冲液，轻轻晃动30秒，甩干并在纸上拍干，以这种方式清洗3次。 3.抗体孵育：每孔加入100μL生物素化抗体工作液，轻轻混匀，盖上封板胶纸，37℃避光反应1h。孵育结束后，重复步骤2中的

计算标准品和样本复孔的平均OD值并减去空白孔的OD值作为校正值。以浓度为横坐标，OD值为纵坐标，在坐标纸上绘出四参数逻辑函数的标准曲线(作图时去掉空白组的值)。或者使用能够生成四参数逻辑（4-P）曲线拟合的计算机软件来创建标准曲线。 若样品OD值高于标准曲线上限，应适当稀释后重测并在计算样本浓度时乘以相应的稀释倍数。

板内变异系数小于10%，板间变异系数小于10%

该试剂盒测定可识别重组小鼠LIF。 其他相关蛋白在稀释缓冲液中制备为50ng/mL，并测定交叉反应性。没有观察到明显的交叉反应。