2-8℃

补体因子D(CFD)是一种蛋白质，由CFD基因编码。该基因所编码的蛋白是由脂肪细胞分泌到血液中的丝氨酸蛋白酶家族的成员。编码的蛋白是替代补体途径的一个组成部分，因其在体液抑制感染性病原体方面的作用而最为著名。它是由肝脏和脂肪细胞合成的，后者是主要来源。被分泌的CFD的原形被MASP-3裂解，形成在体内循环的活性序列。它的催化三联体由Asp102、His57和Ser195组成。CFD的其他关键成分是一个Asp189-Arg218盐桥，它稳定了一个自我抑制环（氨基酸残基212至218）和His57侧链的非经典

本试剂盒采用双抗体夹心法ELISA技术:将捕获抗体包被于酶标板上，捕获样品及标准品中的待测物CFD，清洗后，再加入生物素标记的检测抗体进行孵育后清洗，形成“捕获抗体-抗原-检测抗体”免疫复合物，随后加入链霉亲和素偶联的辣根过氧化物酶进行孵育，待孵育结束后清洗，接着加入TMB显色后，若样本中有待测物则显蓝色，加入终止液停止反应。检测过程中游离的成分均被洗去，用酶标仪在450 nm处测OD值，颜色的深浅和样品中的待测物的含量呈正比，通过绘制标准曲线计算出样本中CFD的浓度。

所有标准品、样品建议复孔检测 1.酶标板准备：确定试验所需要的孔数，取下未使用的酶标条放回装有干燥剂的铝箔袋。 2.样本孵育：每孔分别加入100μL不同浓度的标准品以及预处理过的待测样品（建议样本用通用稀释液最少稀释1倍上样，目的是减少基质效应），盖上封板胶纸，37℃避光反应1 h。孵育结束后，每孔加入300μL 1×洗涤缓冲液，轻轻晃动30秒，甩干并在纸上拍干，以这种方式清洗3次。 3.抗体孵育：每孔加入100μL生物素化抗体工作液，轻轻混匀，盖上封板胶纸，37℃避光反应1h。孵育结束后，重复步骤2中的

计算标准品和样本复孔的平均OD值并减去空白孔的OD值作为校正值。以浓度为横坐标，OD值为纵坐标，在坐标纸上绘出四参数逻辑函数的标准曲线(作图时去掉空白组的值)。或者使用能够生成四参数逻辑（4-P）曲线拟合的计算机软件来创建标准曲线。 若样品OD值高于标准曲线上限，应适当稀释后重测并在计算样本浓度时乘以相应的稀释倍数。

板内变异系数小于10%，板间变异系数小于10%

该试剂盒测定可识别重组小鼠CFD。 其他相关蛋白在稀释缓冲液中制备为50ng/mL，并测定交叉反应性。没有观察到明显的交叉反应。